ESTUDO COMPARATIVO DE 5 TÉCNICAS DE DIAGNÓSTICO PARASITOLÓGICO EM INDIVÍDUOS INTERNADOS NO HOSPITAL SANATÓRIO DO HUAMBO
DOI:
https://doi.org/10.63026/acertte.v6i1.290Palavras-chave:
Estudo Comparativo. Diferentes técnicas. Diagnósticos. Parasitoses.Resumo
Introdução: As Técnicas de Diagnósticos parasitológicos de fezes podem ser classificados de três formas: qualitativos, quantitativos e especiais. Normalmente quando se examina diferentes técnicas as mostras fecais vão apresentar sensibilidade variada na deteção de ovos e larvas de helmintas e cistos de protozoários. O Trabalho teve como objetivo em realizar uma análise comparativa de 5 Técnicas de diagnósticos parasitológicos de fezes. Direto, Willis, Hoffman, Kato Katz e Ziehl Neelsen. Metodologia: O estudo foi realizado na província do Huambo, Município do Huambo. Tratou-se de um estudo descritivo, transversal, utilizando amostras fecais recolhidas durante 3 meses efetivos, de janeiro a março de 2025, amostras de 212 indivíduos de ambos, ambos sexos, com as idades compreendidas entre 18 a 50. Resultados: Foi realizado um estudo de campo do tipo qualitativo e quantitativo, na qual foram estudadas 212 amostras, constatou-se que a Técnica de Willis foi a que mais se apresentou sensível com 93,9% (199) de Positivos e 6,1% (13) de Negativos, se comparando com as de mais técnicas. Considerações finais: Através deste estudo, verificou-se que a sensibilidade de cada técnica foi possível observar que todas amostras deram positivas. Dessa forma podemos afirmar que as prevalências de parasitoses intestinas em doentes são altas.
Downloads
Referências
AHMAD, H. et al. Diagnostic potential of an IgE-ELISA in detecting strongyloidiasis. The American Journal of Tropical Medicine and Hygiene, v. 103, n. 6, p. 2288–2293, 2020. DOI: https://doi.org/10.4269/ajtmh.20-0265. DOI: https://doi.org/10.4269/ajtmh.20-0265
ASCANIO, L. C. et al. In vitro diagnostic methods of Chagas disease in the clinical laboratory: a scoping review. Frontiers in Microbiology, v. 15, e1393992, 2024. DOI: https://doi.org/10.3389/fmicb.2024.1393992. DOI: https://doi.org/10.3389/fmicb.2024.1393992
BALATBAT, A. B. et al. Detection of Cryptosporidium parvum DNA in human feces by nested PCR. Journal of Clinical Microbiology, v. 34, n. 7, p. 1769–1772, 1996. DOI: https://doi.org/10.1128/JCM.34.7.1769-1772.1996. DOI: https://doi.org/10.1128/jcm.34.7.1769-1772.1996
BERNARDES, H. Comparação dos métodos de Lutz, Willis e Kato-Katz no diagnóstico de helmintos intestinais (Uberlândia, MG). 2001. Dissertação (Mestrado) — Universidade Federal de Uberlândia, Uberlândia, 2001. DOI: https://doi.org/10.14393/ufu.di.2001.16. DOI: https://doi.org/10.14393/ufu.di.2001.16
CASTILHO, V. L. P. et al. Exame parasitológico quantitativo das fezes: estudo comparativo entre os métodos de McMaster, Stoll-Hausheer e Kato-Katz. Medicina Tropical, 1984. DOI: https://doi.org/10.1590/S0037-86821984000400008
DACAL, E.; KÖSTER, P. C.; CARMENA, D. Diagnóstico molecular de parasitosis intestinales. Enfermedades Infecciosas y Microbiología Clínica, v. 38, supl. 1, p. 24–31, 2020. DOI: https://doi.org/10.1016/j.eimc.2020.02.005. DOI: https://doi.org/10.1016/j.eimc.2020.02.005
DE ANDRADE, E. C. et al. Parasitoses intestinais: uma revisão sobre seus aspectos sociais, epidemiológicos, clínicos e terapêuticos. Revista Brasileira de Análises Clínicas, v. 13, n. 2, 2010.
DOĞAN, S. et al. Distribution of the intestinal parasites according to species and gender in patients presented to the microbiology laboratory in a tertiary hospital in Somalia between January 2018 and October 2022. Infection and Drug Resistance, v. 16, p. 7007–7014, 2023. DOI: https://doi.org/10.2147/IDR.S434214. DOI: https://doi.org/10.2147/IDR.S434214
DURO, M. VIH/Sida: breve história de uma nova/velha infeção. Acta Farmacêutica Portuguesa, v. 5, n. 1, p. 24–35, 2016.
FIGUEIREDO, M. A. S. Prevalência das enteroparasitoses em pacientes HIV-positivos atendidos no Centro de Saúde do Município de Caruaru/PE. 2007. Trabalho acadêmico - Caruaru, 2007.
GABRIELLI, S. et al. Comparative performance evaluation of four different methods for diagnosing Giardia infection in dogs and zoonotic assemblages’ identification. Veterinary Parasitology, v. 329, e110192, 2024. DOI: https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2024.110192. DOI: https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2024.110192
HAUCK, R.; PACHECO, W. J. Detection of coccidia oocysts in litter and feces of broilers in a floor pen trial. The Journal of Parasitology, v. 107, n. 6, p. 878–881, 2021a. DOI: https://doi.org/10.1645/21-8.
HAUCK, R.; PACHECO, W. J. Detection of coccidia oocysts in litter and feces of broilers in a floor pen trial. The Journal of Parasitology, v. 107, n. 6, p. 878–881, 2021b. DOI: https://doi.org/10.1645/21-8. DOI: https://doi.org/10.1645/21-8
JULIANI, D. Mapeando os métodos diagnósticos em Parasitologia. Blog Gran Cursos Online, 24 abr. 2023. Disponível em: https://blog.grancursosonline.com.br/mapeando-os-metodos-diagnosticos-em-parasitologia/.
KIM, M. et al. Quantification of viable protozoan parasites on leafy greens using molecular methods. Food Microbiology, v. 99, e103816, 2021. DOI: https://doi.org/10.1016/j.fm.2021.103816. DOI: https://doi.org/10.1016/j.fm.2021.103816
LAGATIE, O. et al. Detection of Ascaris lumbricoides infection by ABA-1 coproantigen ELISA. PLoS Neglected Tropical Diseases, v. 14, n. 10, e0008807, 2020. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0008807. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0008807
LEBU, S. et al. Soil-transmitted helminths: a critical review of the impact of co-infections and implications for control and elimination. PLoS Neglected Tropical Diseases, v. 17, n. 8, e0011496, 2023. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0011496. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0011496
MUSSIE, K. M. et al. Bioethical implications of vulnerability and politics for healthcare in Ethiopia and the ways forward. Journal of Bioethical Inquiry, v. 19, n. 4, p. 667–681, 2022. DOI: https://doi.org/10.1007/s11673-022-10210-x. DOI: https://doi.org/10.1007/s11673-022-10210-x
NTONIFOR, N. H. et al. Prevalence of intestinal parasites and associated risk factors in HIV positive and negative patients in Northwest Region, Cameroon. Scientific Reports, v. 12, n. 1, e16747, 2022. DOI: https://doi.org/10.1038/s41598-022-20570-4. DOI: https://doi.org/10.1038/s41598-022-20570-4
OLIE, S. E. et al. Molecular diagnostics in cerebrospinal fluid for the diagnosis of central nervous system infections. Clinical Microbiology Reviews, v. 37, n. 4, e00021-24, 2024. DOI: https://doi.org/10.1128/cmr.00021-24. DOI: https://doi.org/10.1128/cmr.00021-24
ORFALE, Adriana Garcia et al. Fundamentos da gestão logística em saúde: a assistência farmacêutica e a gestão de medicamentos. Revista Científica ACERTTE, v. 5, n. 12, p. e512289, 2025. DOI: 10.63026/acertte.v5i12.289. DOI: https://doi.org/10.63026/acertte.v5i12.289
ORREGO, L. M. et al. Methods for the isolation and study of exovesicle DNA from trypanosomatid parasites. Methods in Molecular Biology, v. 2369, p. 301–317, 2021. DOI: https://doi.org/10.1007/978-1-0716-1681-9_16. DOI: https://doi.org/10.1007/978-1-0716-1681-9_16
ÖZKAN-AHMETOĞLU, M. et al. Investigation of intestinal parasites by conventional and molecular methods in children with gastrointestinal system complaints. Parasitology Research, v. 122, n. 6, p. 1361–1370, 2023. DOI: https://doi.org/10.1007/s00436-023-07836-0. DOI: https://doi.org/10.1007/s00436-023-07836-0
PAES, A. L. V. et al. Enteroparasitoses em pacientes com HIV/AIDS: prevalência, contagem de células CD4 e perfil socioeconômico. Brazilian Journal of Health Review, v. 3, n. 4, p. 7532–7549, 2020. DOI: https://doi.org/10.34119/bjhrv3n4-027. DOI: https://doi.org/10.34119/bjhrv3n4-027
PAGE, B. et al. Influence of intestinal helminth burden on clinical manifestations, therapeutic response, and Leishmania braziliensis load in patients with new world cutaneous leishmaniasis. The American Journal of Tropical Medicine and Hygiene, v. 105, n. 4, p. 1060–1066, 2021. DOI: https://doi.org/10.4269/ajtmh.20-1664. DOI: https://doi.org/10.4269/ajtmh.20-1664
SEIDLOVA, V. et al. Comparison of diagnostic methods for Tetracapsuloides bryosalmonae detection in salmonid fish. Journal of Fish Diseases, v. 44, n. 8, p. 1147–1153, 2021. DOI: https://doi.org/10.1111/jfd.13375. DOI: https://doi.org/10.1111/jfd.13375
SHAMBHU, S. et al. Computational methods for automated analysis of malaria parasite using blood smear images: recent advances. Computational Intelligence and Neuroscience, 2022, e3626726. DOI: https://doi.org/10.1155/2022/3626726. DOI: https://doi.org/10.1155/2022/3626726
SOUSA-FIGUEIREDO, J. C. Angola: mapeamento de esquistossomíase e de helmintíases transmitidas pelo solo – Província do Huambo. 2014.
SOUZA, A. C. et al. Perfil epidemiológico das parasitoses intestinais e avaliação dos fatores de risco em indivíduos residentes em um assentamento rural do Nordeste brasileiro. Revista Conexão UEPG, v. 12, n. 1, p. 26–37, 2016. DOI: https://doi.org/10.5212/Rev.Conexao.v.12.i1.0002. DOI: https://doi.org/10.5212/Rev.Conexao.v.12.i1.0002
STEFANO, V. C. et al. Effects of hypertonic solutions on two species of human intestinal parasites during fecal examination. Future Microbiology, v. 18, p. 197–203, 2023. DOI: https://doi.org/10.2217/fmb-2022-0055. DOI: https://doi.org/10.2217/fmb-2022-0055
TARAFDER, M. et al. Estimating the sensitivity and specificity of Kato-Katz stool examination technique for detection of hookworms, Ascaris lumbricoides and Trichuris trichiura infections in humans in the absence of a gold standard. International Journal for Parasitology, v. 40, n. 4, p. 399–404, 2010. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ijpara.2009.09.003. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ijpara.2009.09.003
TEIXEIRA, P. A. et al. Parasitoses intestinais e saneamento básico no Brasil: estudo de revisão integrativa. Brazilian Journal of Development, v. 6, n. 5, p. 22867–22890, 2020. DOI: https://doi.org/10.34117/bjdv6n5-006
TSUKANOV, V. V.; VASYUTIN, A. V.; TONKIKH, J. L. Parasites of the liver: a global problem? World Journal of Gastroenterology, v. 30, n. 30, p. 3554–3559, 2024. DOI: https://doi.org/10.3748/wjg.v30.i30.3554. DOI: https://doi.org/10.3748/wjg.v30.i30.3554
UDEH, E. O. et al. Gastrointestinal parasitic infections and immunological status of HIV/AIDS coinfected individuals in Nigeria. Annals of Global Health, v. 85, n. 1, p. 99, 2019. DOI: https://doi.org/10.5334/aogh.2554. DOI: https://doi.org/10.5334/aogh.2554
VALE, E. P. Análise comparativa de três métodos parasitológicos de fezes em uma escola do município de Macapá-AP. 2022.
VEROCAI, G. G. et al. M. Diagnostic methods for detecting internal parasites of livestock. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice, v. 36, n. 1, p. 125–143, 2020. DOI: https://doi.org/10.1016/j.cvfa.2019.12.003. DOI: https://doi.org/10.1016/j.cvfa.2019.12.003
WINTERFELD, D. T. et al. Comparison of different diagnostic protocols for the detection of Toxocara spp. in faecal samples of cats and dogs. Parasites & Vectors, v. 17, n. 1, e436, 2024. DOI: https://doi.org/10.1186/s13071-024-06524-x. DOI: https://doi.org/10.1186/s13071-024-06524-x
Downloads
Publicado
Como Citar
Licença
Copyright (c) 2026 REVISTA CIENTÍFICA ACERTTE - ISSN 2763-8928

Este trabalho está licenciado sob uma licença Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Os direitos autorais dos artigos/resenhas/TCCs publicados pertecem à revista ACERTTE, e seguem o padrão Creative Commons (CC BY 4.0), permitindo a cópia ou reprodução, desde que cite a fonte e respeite os direitos dos autores e contenham menção aos mesmos nos créditos. Toda e qualquer obra publicada na revista, seu conteúdo é de responsabilidade dos autores, cabendo a ACERTTE apenas ser o veículo de divulgação, seguindo os padrões nacionais e internacionais de publicação.



